Сравнительная гистоморфометрическая оценка влияния различных стартовых кормов на органы пищеварительной системы молоди кеты (Oncorhynchus keta)

Оптимизация стартовых рационов – важный фактор получения жизнестойкой молоди при искусственном воспроизводстве дальневосточных лососей. В работе представлены результаты изучения морфофункционального состояния пищеварительного тракта (фундальный отдел желудка и средний отдел кишечника), печени и панкреаса молоди кеты (Oncorhynchus keta), выращенной на сахалинском рыбоводном заводе «Адо-Тымовский» в июне 2024 г., с использованием пяти комбикормов («Акварекс», «КРЛС-1», «КРЛС-2», «КРЛС-3» и «Акватех»). Применение методов гистоморфометрии позволило установить, что исследуемые рационы не вызывают патологических изменений, однако инициируют специфические адаптационно-компенсаторные тканевые перестройки. Установлено, что корм «Акварекс» увеличивает секреторную активность фундальных желез желудка (максимальная площадь ядер париетальных клеток – 53,88 мкм²). Рационы «КРЛС-1» и «КРЛС-2» способствуют интенсификации пищеварения: для «КРЛС-1» отмечена максимальная высота абсорбирующего эпителия кишечника (31,55 мкм), а для «КРЛС-2» наибольшее число бокаловидных клеток кишечника (4,0 кл/100 мкм) совместно с увеличением кариометрических показателей панкреацитов. Напротив, потребление кормов «КРЛС-3» и «Акватех» сопровождалось развитием вакуолизации гепатоцитов, а также – локальным расширением собственной пластинки слизистой кишечника с инфильтрацией форменных элементов крови. Проведенные исследования указывают на высокую информативность гистоморфометрических методов для оценки качества рационов и выявления их возможной токсичности.

1. Макоедов А.Н., Макоедов А.А. Тихоокеанские лососи: состояние запасов и перспективы промысла // Известия ТИНРО. 2022. Т. 202. № 2. С. 255-267. https://doi.org/10.26428/1606-9919-2022-202-255-267

2. Шунтов В.П., Волвенко И.В., Темных О.С., Волков А.Ф., Заволокин А.В., Найденко С.В., Долганова Н.Т. К обоснованию экологической емкости дальневосточных морей и субарктической Пацифики для пастбищного выращивания тихоокеанских лососей. Сообщение 4. Влияние фактора плотности на обеспеченность тихоокеанских лососей пищей и их роль в потреблении кормовой базы нектона // Известия ТИНРО. 2010. Т. 161. С. 25-52.

3. Карпенко В.И. Роль раннего морского периода жизни в формировании урожайности поколений дальневосточных лососей // Исследования водных биологических ресурсов Камчатки и северо-западной части Тихого океана. 2000. № 5. С. 35-41.

4. Гамыгин Е.А., Щербина М.А., Передня А.А. Итоги работы по созданию новых кормов для ценных объектов аквакультуры // Нефтегазовые технологии и экологическая безопасность. 2004. № 2. С. 55-60.

5. Литвиненко А.В., Гринберг Е.В., Карпенко И.В., Юрьев А.В. Организация дополнительных исследований в области искусственного воспроизводства тихоокеанских лососей в Сахалинском государственном университете // Рыбное хозяйство. 2025. № 1. С. 82-90. https://doi.org/10.36038/0131-6184-2025-1-82-90

6. Зеленников О.В., Мякишев М.С. Об эффективности выращивания молоди тихоокеанских лососей на рыбоводных заводах Сахалинской области с применением стартовых кормов НПК «Акватех» // Известия ТИНРО. 2022. Т. 202. № 1. С. 208-224. https://doi.org/10.26428/1606-9919-2022-202-208-224

7. Михайлов А.В., Шульгина Е.В. Некоторые особенности естественного нереста и проблемы искусственного воспроизводства симы Oncorhynchus masou (Brevoort, 1856) // Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2024. Т. 18. № 5. С. 304-315. https://doi.org/10.33920/sel-09-2405-01

8. Гаврюсева Т.В., Бочкова Е.В., Сергеенко Н.В., Устименко Е.А. Современное состояние здоровья тихоокеанских лососей рода Oncorhynchus в аквакультуре Камчатки // Исследования водных биологических ресурсов Камчатки и северо-западной части Тихого океана. 2018. № 48. С. 19-30. https://doi.org/10.15853/2072-8212.2018.48.19-30

9. Шульгина Е.В. Оценка готовности к покатной миграции дальневосточных лососей с длительным пресноводным периодом жизни (на примере чавычи Oncorhynchus tshawytscha и кижуча O. kisutch) // Изучение водных и наземных экосистем: история и современность: Тезисы докладов Международной научной конференции, посвящённой 150-летию Севастопольской биологической станции. 2021. С. 618-620.

10. Воробьев В.В. Существенные факторы заболеваний тихоокеанских лососей // Аграрная Россия. 2023. № 5. С. 18-25.

11. Hamidian G., Zirak K., Sheikhzadeh N., Khani Oushani A., Shabanzadeh S., Divband B. Intestinal histology and stereology in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) administrated with nanochitosan/zeolite and chitosan/zeolite composites // Aquaculture Research. 2018. Vol. 49. No 5. P. 1803-1815. https://doi.org/10.1111/are.13634

12. Jiao F., Zhang L., Limbu S.M., Rong H. A comparison of digestive strategies for fishes with different feeding habits: digestive enzyme activities, intestinal morphology and gut microbiota. 2022. https://doi.org/10.22541/au.167222187.73014377/v1

13. Леденев О.А., Ложниченко О.В. Особенности гистологического строения желудочно-кишечного тракта рыб Черного моря // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. 2017. № 2. С. 36-40.

14. Рабазанов Н.И., Курбанов З.М. Микроструктурная организация кишечника и печени сазана (Cyprinus carpio L.) и леща (Abramis brama orientalis B.) в связи с характером питания и меняющимися условиями среды дагестанского побережья Каспийского моря // Известия Дагестанского государственного педагогического университета. Естественные и точные науки. 2015. № 1. С. 65-71.

15. Ostos Garrido M.V., Nuñez Torres M.I., Abaurrea Equisoain M.A. Histological, histochemical and ultrastructural analysis of the gastric mucosa in Oncorhynchus mykiss // Aquaculture. 1993. Vol. 115. No 1-2. P. 121-132. https://doi.org/10.1016/0044-8486(93)90363-4

16. Verdile N., Pasquariello R., Scolari M., Scirè G., Brevini T.A.L., Gandolfi F. A Detailed Study of Rainbow Trout (Onchorhynchus mykiss) Intestine Revealed That Digestive and Absorptive Functions Are Not Linearly Distributed along Its Length // Animals. 2020. Vol. 10. No 4. P. 745. https://doi.org/10.3390/ani10040745

17. Buddington R.K., Krogdahl A., Bakke-McKellep A.M. The intestines of carnivorous fish: structure and functions and the relations with diet // Acta Physiologica Scandinavica. 1997. Vol. 638. P. 67-80.

18. Bernet D., Schmidt H., Meier W., Burkhardt-Holm P., Wahli T. Histopathology in fish: proposal for a protocol to assess aquatic pollution //journal of Fish Diseases. 1999. Vol. 22. No 1. P. 25-34. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.1999.00134.x

19. Aidos L., Mirra G., Pallaoro M., Herrera Millar V.R., Radaelli G., Bazzocchi C., Modina S.C., Di Giancamillo A. How Do Alternative Protein Resources Affect the Intestine Morphology and Microbiota of Atlantic Salmon // Animals. 2023. Vol. 13. No 12. P. 1922. https://doi.org/10.3390/ani13121922

20. Ostaszewska T., Dabrowski K., Palacios M.E., Olejniczak M., Wieczorek M. Growth and morphological changes in the digestive tract of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and pacu (Piaractus mesopotamicus) due to casein replacement with soybean proteins // Aquaculture. 2005. Vol. 245. No 1-4. P. 273-286. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.12.005

21. Suvarna S.K., Layton C., Bancroft J.D. Bancroft’s Theory and Practice of Histological Techniques. 8th ed. – Philadelphia: Elsevier. 2018. 680 p. https://doi.org/10.1016/c2015-0-00143-5

22. Schindelin J., Arganda-Carreras I., Frise E., Kaynig V., Longair M., Pietzsch T., Preibisch S., Rueden C., Saalfeld S., Schmid B., Tinevez J.-Y., White D.J., Hartenstein V., Eliceiri K., Tomancak P., Cardona A. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis // Nature Methods. 2012. Vol. 9. No 7. P. 676-682. https://doi.org/10.1038/nmeth.2019

23. Кочетков Н.И., Никифоров-Никишин Д.Л., Смородинская С.В., Глебова И.А., Кривошеев Ф.А. Гистологические и морфометрические проявления полового диморфизма в печени и туловищной почке данио-рерио (Danio rerio) // Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2025. Т. 19. № 11. С. 822-835. https://doi.org/10.33920/sel-09-2511-06

24. Кочетков Н.И., Никифоров-Никишин Д.Л., Гаврилин К.В., Белинский А.А. Морфологическая и функциональная характеристика лимфоидной ткани среднего отдела кишечника осетровых видов рыб на примере стерляди (Acipenser ruthenus) // Тимирязевский биологический журнал. 2025. № 1. С. 202531401. https://doi.org/10.26897/2949-4710-2025-3-1-4-01

25. Bjørgen H., Li Y., Kortner T.M., Krogdahl Å., Koppang E.O. Anatomy, immunology, digestive physiology and microbiota of the salmonid intestine: Knowns and unknowns under the impact of an expanding industrialized production // Fish & Shellfish Immunology. 2020. Vol. 107. P. 172-186. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2020.09.032

26. Egerton S., Wan A., Murphy K., Collins F., Ahern G., Sugrue I., Busca K., Egan F., Muller N., Whooley J., McGinnity P., Culloty S., Ross R.P., Stanton C. Replacing fishmeal with plant protein in Atlantic salmon (Salmo salar) diets by supplementation with fish protein hydrolysate // Scientific Reports. 2020. Vol. 10. No 1. https://doi.org/10.1038/s41598-020-60325-7

27. Mosberian-Tanha P., Øverland M., Landsverk T., Reveco F.E., Schrama J.W., Roem A.J., Agger J.W., Mydland L.T. Bacterial translocation and in vivo assessment of intestinal barrier permeability in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with and without soyabean meal-induced inflammation //journal of Nutritional Science. 2016. Vol. 5. https://doi.org/10.1017/jns.2016.7

28. do Carmo Ota E., Honorato C.A., Heredia-Vieira S.C., Flores-Quintana C.I., de Castro Silva T.S., Inoue L.A.K.A., Cardoso C.A.L. Hepatic and gastroprotective activity of Serjania marginata leaf aqueous extract in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) // Fish Physiology and Biochemistry. 2019. Vol. 45. No 3. P. 1051-1065. https://doi.org/10.1007/s10695-019-00622-9

29. Баштовой А.Н., Ярочкин А.П., Ведущий Н.С., Валова В.Н., Тимчишина Г.Н., Павель К.Г., Якуш Е.В., Павловский А.М. Сравнительная оценка стартовых традиционных и ферментированных комбикормов для молоди тихоокеанских лососей // Известия ТИНРО. 2017. Т. 191. С. 223-234.

30. Уголев A.M., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. – СПб.: Гидрометеоиздат. 1993. 238 с.

31. Milián-Sorribes M.C., Martínez-Llorens S., CruzCastellón C., Jover-Cerdá M., Tomás-Vidal A. Effect of fish oil replacement and probiotic addition on growth, body composition and histological parameters of yellowtail (Seriola dumerili) // Aquaculture Nutrition. 2020. Vol. 27. No 1. P. 3-16. https://doi.org/10.1111/anu.13171

32. Nimalan N., Sørensen S.L., Fečkaninová A., Koščová J., Mudroňová D., Gancarčíková S., Vatsos I.N., Bisa S., Kiron V., Sørensen M. Supplementation of lactic acid bacteria has positive effects on the mucosal health of Atlantic salmon (Salmo salar) fed soybean meal // Aquaculture Reports. 2023. Vol. 28. P. 101461. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2022.101461

33. Oropesa A.L., Jiménez B., Fallola C., Pula H.J., Cuesta J.M., Gómez L. Histological Alterations on the Structure of the Excretory Renal System in Tench (Tinca tinca) After Exposure to 17-Alpha-Ethynylestradiol // Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 2013. Vol. 91. No 6. P. 623-629. https://doi.org/10.1007/s00128-013-1088-2

34. Воробьев В.В., Чвала И.А., Коренной Ф.И. Антропогенные факторы заболеваний и гибели атлантических лососей (Salmo salar L.) // Рыбное хозяйство. 2023. № 3. С. 14-24. https://doi.org/10.37663/0131-6184-2023-3-14-24