Связь паразитарной нагрузки с химическим составом мышечной ткани белокорого палтуса (Hippoglossus stenolepis) восточной Камчатки
https://doi.org/10.36038/0131-6184-2026-4-174-181
EDN: OSGLJX
Аннотация
По результатам паразитологического и химического анализа белокорого палтуса (Hippoglossus stenolepis), выловленного в тихоокеанских водах восточной Камчатки в марте-апреле 2022 г., установлена заражённость трематодами, нематодами и акантоцефалами с максимальной экстенсивностью инвазии для Hemiurus levinseni (83,3%) и Derogenes varicus (79,2%). Суммарная паразитарная нагрузка изменялась от 3 до 116 экз./рыбу. Личинок гельминтов в мускулатуре не обнаружено. Химический состав характеризовался вариабельностью: влага (73,3-80,7%), белок (15,9-20,7%), жир (0,3-4,55%). Выявлена статистически значимая отрицательная корреляция между паразитарной нагрузкой и содержанием жира (ρ= -0,43, p=0,038), что указывает на потенциальное снижение пищевой ценности сырья при высоком уровне заражённости за счёт обеднения липидного компонента и повышения влажности.
Ключевые слова
Об авторах
П. С. БеляевРоссия
Беляев Павел Сергеевич – аспирант ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО».
105187, Москва, Окружной проезд, д. 19
Е. В. Лаврухина
Россия
Лаврухина Елизавета Васильевна – главный специалист отдела инновационных технологий департамента технического регулирования.
105187, Москва, Окружной проезд, д. 19
А. В. Согрина
Россия
Согрина Анастасия Викторовна – кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник отдела морских рыб Дальнего Востока.
105187, Москва, Окружной проезд, д. 19
Список литературы
1. Бауер О.Н. (ред.) Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т. 3: Паразитические многоклеточные. Ч. 2. Л.: Наука, 1987. 583 с. (Определители по фауне СССР, издаваемые Зоологическим институтом АН СССР; вып. 149).
2. Быков В.П. Справочник по химическому составу и технологическим свойствам морских и океанических рыб. М.: ВНИРО, 1998. 224 с.
3. Быховская-Павловская И.Е. Паразитологическое исследование рыб. Л.: Наука, 1969. 108 с.
4. Гаевская А.В. Паразиты и болезни морских и океанических рыб в природных и искусственных условиях. Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2004. 237 с.
5. ГОСТ 31339–2006. Рыба, нерыбные объекты и продукция из них. Правила приемки и методы отбора проб. М.: Стандартинформ, 2008. 15 с.
6. ГОСТ 7636–85. Рыба, морские млекопитающие, морские беспозвоночные и продукты их переработки. Методы анализа. М.: Стандартинформ, 2010. 123 с.
7. Дьяченко Ю.В., Борзова В.Ю., Луцук С.Н., Водянов А.А. Физико-химические показатели рыбы, пораженной инвазионными заболеваниями // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 6. URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=22848 (дата обращения: 02.04.2025).
8. Извекова Г.И. Физиологическая специфика взаимоотношений между Triaenophorus nodulosus (Cestoda) и его хозяевами – рыбами // Паразитология. 2001. Т. 35, № 1. С. 60-69.
9. Извекова Г.И., Кузьмина В.В. Влияние заражения плероцеркоидами Ligula intestinalis на активность пищеварительных ферментов и содержание гликогена в тканях леща // Паразитология. 1996. Т. 30, № 1. С. 45-52.
10. Методы санитарно-паразитологической экспертизы рыбы, моллюсков, ракообразных, земноводных, пресмыкающихся и продуктов их переработки: МУК 3.2.988-00. М.: Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России, 2000. 49 с.
11. Орлов А.М., Мухаметов И.Н. Сравнительная характеристика питания белокорого палтуса Hippoglossus stenolepis из разных районов северо-западной части Тихого океана // Вопросы ихтиологии. 2007. Т. 47, № 6. С. 783-793.
12. Силкина Н.И., Микряков В.Р. Влияние Ligula intestinalis на некоторые показатели липидного обмена селезенки хозяина леща Abramis brama разного возраста // Паразитология. 2005. Т. 39, № 4. С. 299-305.
13. Фролов Е.В. Трематоды некоторых видов камбал прибрежных вод Южного Сахалина // Известия ТИНРО. 2007. Т. 149. С. 321-330.
14. Gibson D.I. Trematoda // Guide to the parasites of fishes of Canada. Part IV. / Eds. L. Margolis, Z. Kabata. Ottawa: NRC Research Press, 1996. P. 1-373. (Can. Spec. Publ. Fish Aquat. Sci.; No. 124).
15. Hassanine R., Al-Hasawi Z. Acanthocephalan Worms Mitigate the Harmful Impacts of Heavy Metal Pollution on Their Fish Hosts // Fishes. 2021. Vol. 6, No. 4. P. 49. DOI: 10.3390/fishes6040049.
16. Jouini J., Besbes N., Sadok S. et al. Does Anisakis spp. infestation affect the proximate composition, fatty acids, and minerals contents of its host Merluccius merluccius? // Parasitology Research. 2023. Vol. 122. P. 3053-3062. DOI: 10.1007/s00436-023-07996-z.
17. Nachev M., Sures B. Seasonal profile of metal accumulation in the acanthocephalan Pomphorhynchus laevis: a valuable tool to study infection dynamics and implications for metal monitoring // Parasites & Vectors. 2016. Vol. 9, No. 1. P. 300. DOI: 10.1186/s13071-016-1576-4.
18. Telahigue K., Rabeh I., Chetoui I. et al. To what extent are hake fat and its oil quality affected by the parasite Lernaeocera lusci? // Grasas y Aceites. 2019. Vol. 70, No. 2. P. e297. DOI: 10.3989/gya.0697181
Рецензия
Для цитирования:
Беляев П.С., Лаврухина Е.В., Согрина А.В. Связь паразитарной нагрузки с химическим составом мышечной ткани белокорого палтуса (Hippoglossus stenolepis) восточной Камчатки. Рыбное хозяйство. 2026;(4):174-181. https://doi.org/10.36038/0131-6184-2026-4-174-181. EDN: OSGLJX
For citation:
Belyaev P.S., Lavrukhina E.V., Sogrina A.V. Association between parasitic load and the chemical composition of muscle tissue in Pacific halibut (Hippoglossus stenolepis) from the waters of Eastern Kamchatka. Fisheries. 2026;(4):174-181. (In Russ.) https://doi.org/10.36038/0131-6184-2026-4-174-181. EDN: OSGLJX
JATS XML






















