Оценка влияния активированного угля на организм радужной форели (Oncorhynchus mykiss)

Цель данного исследования – оценка эффективности использования активированного угля в дозировках 1, 2 и 3 г/кг корма в кормлении годовиков радужной форели (Oncorhynchus mykiss). Исследование выполнено в условиях садкового хозяйства. Рыбы были разделены на 4 группы: контроль и 3 опытные. Результаты показали, что 2 г/кг корма активированного угля оказалось лучшей дозировкой для повышения живой массы на 19,6% (р≤0,01) и энергетической ценности продукции на 24,8%, при этом кормовой коэффициент снижался на 12,5%. Было отмечено значительное снижение ряда токсических элементов – Cd, As, Sr и Al, при повышении Pb. Применение активированного угля в дозировках 1 и 3 г/кг корма не приводило к изменениям в рыбоводно-биологических показателях, за исключением повышения энергетической ценности (на 22,6-23,5%), при этом кормовой коэффициент возрастал до 15,8%. Однако во всех опытных группах установлено заметное снижение ряда аминокислот в мышечной ткани рыб, в том числе незаменимых – лейцин + изолейцин (до 20,8%) и валин (до 22,1%). В 1 группе также установлено снижение лизина на 18,1% по сравнению с контрольными значениями. При этом повышалось содержание жира до 88,2% (р≤0,05). Выживаемость во всех опытных группах составила 100%. Таким образом, из трех выбранных дозировок активированного угля (1, 2 и 3 г/кг корма), в качестве кормовой добавки в рационе годовиков радужной форели, наилучший результат был получен при использовании дозы 2 г/кг корма.

1. Hussein E.E., El Basuini M.F., Ashry A.M., Habiba M.M., Teiba I.I., El-Rayes T.K., Khattabb A.A.A., Shahin S.A., El-Ratel I.T., Badr M.R., Dawood M.A.O. Effect of dietary sage (Salvia officinalis L.) on the growth performance, feed efficacy, blood indices, non-specific immunity, and intestinal microbiota of European sea bass (Dicentrarchus labrax). Aquaculture Reports. 2023. V. 28. P. 101460.

2. El Basuini M.F., Teiba I.I., Shahin S.A., Mourad M.M., Zaki M.A.A., Labib E.M.H., Azra M.N., Sewilam H.S., El-Dakroury M.F., Dawood M.A.O. Dietary Guduchi (Tinospora cordifolia) enhanced the growth performance, antioxidative capacity, immune response and ameliorated stress-related markers induced by hypoxia stress in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Fish & Shellfish Immunology. 2022. V. 120. Pp. 337344.

3. Firdus F., Samadi S., Muhammadar A.A., Sarong M.A., Muchlisin Z.A., Sari W., Mellisa S., Satria S., Boihaqi B., Batubara A.S. Supplementation of rice husk activated charcoal in feed and its effects on growth and histology of the stomach and intestines from giant trevally, Caranx ignobilis. F1000Res. 2020. V. 9. P. 1274.

4. Elhetawy A.I.G., Abdel-Rahim M.M., Sallam A.E., Shahin S.A., Lotfy A.M.A., El Basuini M.F. Dietary Wood and Activated Charcoal Improved Ammonium Removal, Heavy Metals Detoxification, Growth Performance, Blood Biochemistry, Carcass Traits, and Histopathology of European Seabass. Aquaculture Nutrition. 2023. V. 10. P. 8860652.

5. Abd El-Hameed S.A.A., Negm S.S., Ismael N.E.M., Naiel M.A.E., Soliman M.M., Shukry M., Abdel-Latif H.M.R. Effects of Activated Charcoal on Growth, Immunity, Oxidative Stress Markers, and Physiological Responses of Nile Tilapia Exposed to Sub-Lethal Imidacloprid Toxicity. Animals (Basel). 2021. V. 11 (5). P. 1357.

6. Samadaii S., Bahrekazemi M. The effect of diets containing different levels of active charcoal on growth performance, body composition, haematological parameters and possibility of heavy metals detoxification in big sturgeon (Huso huso). Aquaculture Research. 2019. V. 51 (1). Pp. 91-101.

7. Wong C.F., Saif U., Chow K.L., Wong J.T.F., Chen X.W., Liang Y., Cheng Z., Tsang Y.F., Wong M.H., Man Y.B. Applications of charcoal, activated charcoal, and biochar in aquaculture - A review. The Science Of The Total Environment. 2024. V. 929. P. 172574.

8. Белова М.А., Фонякина В.С., Штер К.В., Никитин И.А., Новиченко О.В., Кутузов М.Н., Вилкова Д.Д. Аквакультура радужной форели: мировые тенденции, российская практика и региональные перспективы развития // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. 2025. № 2. С. 141-150.

9. Chen L., Wang L., Li Y., Wu X., Long X. Comprehensive metabolomics and transcriptomics analyses investigating the regulatory effects of different sources of dietary astaxanthin on the antioxidant and immune functions of commercial-sized rainbow trout. Frontiers in Immunology. 2024. V. 15. P. 1408168.

10. Khalid M.A., Hussain S.M., Mahboob S., Al-Ghanim M.K.A., Riaz M.N. Biochar as a feed supplement for nutrient digestibility and growth performance of Catla catla. Saudi Journal of Biological Sciences. 2022. V. 29 (12). P. 103453.

11. Пономарева Е.Н., Сорокина М.Н., Григорьев В.А., Мазанко М.С., Рудой Д.В. Сравнительная оценка молоди карпа, выращенной с применением пробиотических препаратов на основе различных штаммов Bacillus // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. 2025. № 2. С. 83-96.

12. Michael F.R., Helal A.M. Rule of dietary activated wood charcoal on the growth and biochemical composition of Gilthead Seabream (Sparus aurata) reared under different stocking densities. Life Sciences Journal. 2018. V. 15 (4). Pp. 79-86.

13. Мирошникова Е.П., Мингазова М.С., Аринжанов А.Е., Килякова Ю.В. Элементный статус карпа при введении в рацион биологически активных кормовых добавок // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. 2025. № 1. С. 75-84.

14. Shahjahan M., Taslima K., Rahman M.S., Al-Emran M., Alam S.I., Faggio C. Effects of heavy metals on fish physiology – A review. Chemosphere. 2022. V. 300. P. 134519.

15. Abu-Elala N.M., Khattab M.S., AbuBakr H.O., Helmy S., Younis N.A., Dawood M.A.O., El Basuini M.F. Neem leaf powder (Azadirachta indica) mitigates oxidative stress and pathological alterations triggered by lead toxicity in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Scientific Reports. 2023. V. 13. P 9170.

16. Miroshnikov S., Notova S., Kazakova T., Marshinskaia O. The total accumulation of heavy metals in body in connection with the dairy productivity of cows. Environmental Science and Pollution Research International. 2021. Vol. 28 (36). Pp. 49852-49863.

17. Emenike E.C., Iwuozor K.O., Anidiobi S.U. Heavy Metal Pollution in Aquaculture: Sources, Impacts and Mitigation Techniques. Biological Trace Element Research. 2022. V. 200 (10). P. 4476-4492.

18. Zheng J., Zhang W., Dan Z., Zhuang Y., Liu Y., Mai K., Ai Q. Replacement of dietary fish meal with Clostridium autoethanogenum meal on growth performance, intestinal amino acids transporters, protein metabolism and hepatic lipid metabolism of juvenile turbot (Scophthalmus maximus L.). Frontiers in Physiology. 2022. V. 13. P. 981750.

19. Huang Z., Aqeya J.J., Zhu C., Tran N.T., Hong Y., Li S., Yao D., Zhang Y. Modulation of Crustacean Innate Immune Response by Amino Acids and Their Metabolites: Inferences From Other Species. Frontiers in Immunology. 2020. V. 11. P. 574721.

20. Wang S., Li X., Zhang M., Jiang H., Wang R., Qian Y., Li M. Ammonia stress disrupts intestinal microbial community and amino acid metabolism of juvenile yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco). Ecotoxicology and Environmental Safety. 2021. V. 227. P. 112932.

21. Кучихин Ю.А., Никифоров-Никишин А.Л., Кли- мов В.А., Восканян О.С. Влияние соевого белкового концентрата в кормах для радужной форели на органолептические показатели и аминокислотный состав рыбной продукции. // Вестник Керченского государственного морского технологического университета. 2025. № 2. С. 63-71.

22. Pirarat N., Boonananthanasarn S., Krongpong L., Katagiri T., Maita M. Effect of Activated CharcoalSupplemented Diet on Growth Performance and Intestinal Morphology of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). The Thai Journal of Veterinary Medicine. 2014. V. 45 (1). Pp. 113-119.